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    食品店用菌粗蛋白質含量測定方法


    【發布日期】:2004-08-25  【來源】:中國食用菌
    【核心提示】:GB/T15673─19951主題內容與適用范圍  本標準規定了食用菌中粗蛋白質含量的測定方法。  本標準適用于食用菌中粗蛋白質含量的

    GB/T15673─1995

    1主題內容與適用范圍

      本標準規定了食用菌中粗蛋白質含量的測定方法。

      本標準適用于食用菌中粗蛋白質含量的測定。

    2引用標準

      GB12530 食用菌取樣方法

      GB12531 食用菌水分測定

    3方法提要或原理

      采用半微量凱氏定氮法,即在加速劑存在下,以硫酸破壞樣品中有機物,加堿蒸餾,滴定所釋放的氨,計算出其含氮量。含氮量乘上換算系數6.25即得樣品的粗蛋白質量。菇類可消化蛋白質是粗蛋白的70%左右,含氮量乘上4.38,即為可消化蛋白質的含量。

    4試劑

      分析中,除另有說明,均限用分析純試劑、蒸餾水或相當純度的水。

    4.1硫酸(GB625):分析純或化學純,密度1.84g/mL。

    4.2鹽酸(GB622):密度1.18g/mL。

    4.3氫氧化鈉溶液:濃度400g/L,用分析純或化學純氫氧化鈉(GB629)配制。

    4.4硼酸(GB628)溶液:濃度20g/L,為蒸餾時的吸收液。

    4.5加速劑:將600g硫酸鉀(HG3―920)和100g五水合硫酸銅(GB665CuSO4?5H2O)混勻,充分研磨后過40目篩,試劑瓶內密封保存。

    4.6鹽酸標準溶液:濃度0.05mol/L或0.1mol/L,用無水碳酸鈉或鄰苯二甲酸氫鉀標定其濃度,精確到小數點后第四位。

    4.7甲基紅-溴甲酚綠混合指示劑:50mL濃度為2g/L的溴甲酚綠(HG3―1220)95%乙醇(GB679)溶液和10mL濃度為2g/L的甲基紅(HG3―958)95%乙醇溶液混合。

    5儀器、設備

    5.1電熱鼓風干燥箱。

    5.2小型植物粉碎機:備有1mm孔徑的金屬篩網。

    5.3分樣篩:備有孔徑0.42mm(40目)和孔徑0.84mm(20目)篩子。

    5.4玻璃研缽:備有研杵。

    5.5廣口瓶:帶磨口。

    5.6剪刀和小刀。

    5.7分析天平:感量0.0001g。

    5.8扭力天平。

    5.9可調電爐:0~600℃。

    5.10通風櫥。

    5.11消煮架:鐵制,可使凱氏瓶在消煮時與垂直方向成30°~45°角。

    5.12硬質凱氏瓶:容積100mL。

    5.13半微量凱氏定氮蒸餾裝置。

    5.14半微量滴定管:10mL。

    5.15彎頸三角漏斗:直徑25mm。

    5.16錐形瓶:250mL。

    6樣品

    6.1取樣方法和數量

    6.1.1干制品(蘑菇干片、干香菇、黑木耳和銀耳等)按GB12530中規定要求進行。總量不得少于100g。

    6.1.2鮮菇在每批不同的地方隨機取樣作為原始樣品,總量不得少于1000g。

    6.2試樣的制備

    6.2.1干品直接用剪刀剪成小塊,在80~100℃干燥箱中烘至發脆后冷卻,立即用小型植物粉碎機粉碎。棄去開始粉碎出的樣品(約占總樣十分之一)。粉碎過的樣品均需過40目篩。未能過篩部分再次粉碎或經研缽內研磨之后再過篩,直至全部樣品過篩為止。銀耳和木耳樣品因質地關系經粉碎后大部分樣品不能過40目篩,故要求全部樣品過20目篩,過篩后的樣品裝入清潔的廣口瓶內保存備用。樣品密封后填寫標簽,注明品名、日期、交樣單位和取樣人等。

    6.2.2鮮菇取樣后立即切成4mm厚度的菇片,鮮耳則用手撕成小塊均勻地攤在干燥箱內墊有紗布的鐵絲網上,50℃鼓風干燥6h以上。待樣品半干后再逐步提高溫度至80~100℃。樣品發脆之后冷卻,立即用粉碎機粉碎。其他操作同干品。

    7分析步驟

    7.1稱樣:稱取試樣0.3~0.5g(蘑菇、香菇、草菇和平菇等高蛋白質的樣品為0.3g,木耳、銀耳和茯苓等低蛋白質含量的樣品則為0.5g),精確到0.0001g。同時按GB12531中規定的方法稱樣測定試樣的含水量。

    7.2消煮:試樣無損地倒入凱氏瓶中,加入加速劑粉末(4.5)3.5g,混勻,最后加入濃硫酸(4.1)5mL,輕輕搖動凱氏瓶使試樣完全濕潤。消煮時利用消煮架將凱氏瓶斜放在電爐上加熱。瓶口加彎頸三角漏斗。開始時緩慢地加熱,待瓶內硫酸液沸騰后,調節電爐溫度,防止泡沫沖到凱氏瓶頸上。經常旋轉凱氏瓶,直至有機物完全炭化、泡沫消失為止。隨后用猛火加熱,使溶液不斷處于沸騰狀態。溶液變清呈綠色之后繼續加熱0.5h后結束。整個過程在通風櫥內進行。

    7.3蒸餾:裝好半微量定氮蒸餾裝置。使用前用蒸餾水沖洗干凈。在蒸氣發生瓶內加入2/3~3/4容積的蒸餾水。將冷凝管下端插入盛有10mL硼酸吸收液(4.4)的250mL錐形瓶液面下,吸收液中預先加入5~6滴混合指示劑(4.7)。通電加熱,待蒸氣產生后開始蒸餾。從加樣口將凱氏瓶中消煮好的樣品液倒入,并用蒸餾水沖洗凱氏瓶數次,確保樣品全部加入。立即加入氫氧化鈉溶液(4.3)20mL,使樣品溶液呈強咸性。加樣口蓋塞封閉,通入蒸氣,使反應室內蒸餾液猛烈沸騰,釋入出的氨被吸收液所吸收,待吸收液開始變綠色之后繼續蒸餾5~6min,吸收液總量達100mL左右時停止蒸餾。

    7.4滴定:取出吸收瓶,用鹽酸標準液(4.6)將吸收液由藍綠色滴定至灰紫色為終點。

    7.5空白試驗:不加試樣的加速劑和濃硫酸作為空白樣品,按上述步驟同時進行測定。空白試驗所消耗的鹽酸標準溶液體積須小于0.25mL。

    8分析結果的計算

    8.1計算

    粗蛋白質(干基,%)=〔c(V2-V1)×0.014×6.25〕/〔m(1-X)〕×100

    式中:c──

    鹽酸標準溶液的濃度,mol/L;

    V1──空白試驗滴定消耗的鹽酸標準溶液體積,mL;

    V2──樣品滴定消耗的鹽酸標準溶液體積,mL;

    m──樣品的質量,g;

    0.014──氮的摩爾質量,g/mmol;

    X──樣品含水量,%;

    6.25──氮換算成粗蛋白質的系數。

    8.2允許差

      取平行測定結果的算術平均值為測定結果,保留小數后一位。

      平行測定結果的絕對差值不大于0.2%。

     
     
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